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微血管內皮細胞培養基的培養工作方法介紹

更新時間:2025-09-02瀏覽:547次

微血管內皮細胞(MicrovascularEndothelialCells,MVECs)是構成微血管(如毛細血管、小靜脈)內壁的關鍵細胞,其培養基及培養方法需嚴格模擬體內微環境,以維持其特異性功能和形態。以下是微血管內皮細胞培養基的配方、培養方法及關鍵注意事項的詳細說明:  
一、培養基核心成分  
微血管內皮細胞培養基需包含以下關鍵成分,以支持細胞增殖、維持屏障功能及抑制平滑肌細胞污染:  
基礎培養基  
推薦選擇:  
EndothelialCellBasalMedium-2(EBM-2):專為內皮細胞設計,含低水平生長因子,避免過度刺激。  
M199或DMEM/F12:需額外補充生長因子和營養成分。  
pH與滲透壓:維持pH7.2-7.4,滲透壓280-320mOsm/kg。  
生長因子與補充劑  
內皮細胞生長補充劑(ECGS):含酸性成纖維細胞生長因子(aFGF)、肝素等,促進內皮細胞增殖。  
血管內皮生長因子(VEGF):濃度5-10ng/mL,維持血管生成潛能。  
胰島素樣生長因子-1(IGF-1):濃度10-20ng/mL,促進細胞貼壁與存活。  
氫化可的松:濃度1μg/mL,抑制平滑肌細胞污染。  
L-谷氨酰胺:濃度2mM,提供能量代謝底物。  
血清與抗生素  
胎牛血清(FBS):濃度5%-10%,提供生長因子和貼壁因子。需篩選低內毒素批次(<0.1EU/mL)。  
青霉素-鏈霉素:濃度100U/mL青霉素+100μg/mL鏈霉素,預防細菌污染。  
兩性霉素B:濃度0.25μg/mL,抑制真菌污染(可選)。  
特殊添加劑(按需選擇)  
Rho激酶抑制劑(Y-27632):濃度10μM,促進細胞貼壁(適用于原代培養或傳代初期)。  
肝素:濃度100μg/mL,增強VEGF活性并抑制凝血酶誘導的細胞收縮。  
抗壞血酸:濃度50μg/mL,促進膠原蛋白合成,維持細胞外基質穩定性。  
二、培養方法詳解  
1.細胞獲取與原代培養  
組織來源:  
動物模型:大鼠腦、視網膜、肺或脂肪組織;小鼠腦或耳部皮膚。  
人類來源:臍帶靜脈(需消化去除大血管內皮細胞)、脂肪組織或皮膚活檢樣本。  
分離方法:  
酶消化法:  
剪碎組織至1mm³碎片,用0.1%膠原酶A或II型膠原酶37℃消化30-60分鐘。  
加入等體積含10%FBS的DMEM終止消化,1000rpm離心5分鐘棄上清。  
用培養基重懸細胞,通過200目濾網過濾去除未消化組織。  
磁珠分選法:利用CD31或VE-cadherin抗體標記內皮細胞,通過磁珠分離純化。  
2.細胞接種與傳代  
接種密度:  
原代細胞:5×10?cells/cm²(避免密度過低導致細胞老化)。  
傳代細胞:3×10?cells/cm²(維持對數生長期)。  
傳代操作:  
棄舊培養基,用PBS清洗2次。  
加入0.05%胰蛋白酶-EDTA,37℃消化2-5分鐘(顯微鏡下觀察細胞變圓)。  
加入等體積含血清培養基終止消化,輕柔吹打成單細胞懸液。  
1000rpm離心5分鐘,用新鮮培養基重懸后接種。  
3.培養條件優化  
溫度與CO?:37℃、5%CO?恒溫培養箱。  
濕度控制:培養瓶內加入3-5mL無菌PBS防止蒸發。  
換液頻率:  
原代培養:每48小時半量換液(避免頻繁擾動影響貼壁)。  
傳代細胞:每24-48小時全量換液(根據培養基顏色變化調整)。  
細胞形態監測:  
正常內皮細胞呈鵝卵石樣排列,形成單層緊密連接。  
若出現紡錘形細胞(平滑肌細胞污染)或細胞脫落,需調整血清濃度或添加氫化可的松。  
三、關鍵注意事項  
污染防控:  
嚴格無菌操作,使用預封口培養瓶或蓋玻片。  
定期檢測支原體污染(PCR法或熒光染色法)。  
細胞鑒定:  
免疫熒光檢測內皮細胞標志物(如CD31、VE-cadherin、vWF)。  
透射電鏡觀察Weibel-Palade小體(內皮細胞特有細胞器)。  
功能驗證:  
跨內皮電阻(TEER)檢測屏障功能(正常值>150Ω·cm²)。  
乙?;兔芏戎鞍祝ˋc-LDL)攝取實驗驗證內吞功能。  
儲存與復蘇:  
液氮凍存:含10%DMSO的凍存液,-80℃過夜后轉入液氮。  
快速復蘇:37℃水浴1分鐘內融化,逐步稀釋DMSO至0.1%。  
四、應用場景拓展  
疾病模型構建:通過高糖培養基模擬糖尿病微血管病變,或缺氧培養模擬缺血性損傷。  
藥物篩選:檢測化合物對內皮細胞增殖、遷移或血管生成的影響(如抗血管生成藥物篩選)。  
組織工程:與膠原蛋白支架共培養,構建血管化組織模型。

 

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